Офтальмол. журн. — 2018. — № 5. — С. 32-38.

УДК 617.7-007.681:617.735-085.849.19-036.8

https://doi.org/10.31288/oftalmolzh201853238

 

Эффективность комплексной нейропротекции ганглиозных клеток сетчатки при глаукомной оптической нейропатии 

О. В. Гузун, канд. мед. наук; Н. И. Храменко, канд. мед. наук; С. Б. Слободяник, канд. мед. наук;  В. С. Пономарчук, д-р мед. наук; проф.; О. А. Перетягин, канд. мед. наук

ГУ «Институт глазных болезней и тканевой терапии им.В.П. Филатова НАМН Украины»; 

Одесса (Украина) 

E-mail: olga.v.guzun@gmail.com

КАК ЦИТИРОВАТЬ: Гузун О.В.Эффективность комплексной нейропротекции ганглиозных клеток сетчатки при глаукомной оптической нейропатии / О.В.Гузун, Н.И. Храменко // Офтальмол. журн. — 2018. — № 5. — С. 32-38. https://doi.org/10.31288/oftalmolzh201853238 


Актуальность. Проблема глаукомной оптической нейропатии не разрешена, независимо от стабилизации ВГД. Необходима эффективная нейропротекция ганглиозных клеток сетчатки для стабилизации глаукомного процесса.

Цель. Изучить эффективность комплексной нейропротекции у больных с глаукомной оптической нейропатией путем последовательного воздействия лазерного излучения на папилломакулярный пучок зрительного анализатора с последующим длительным (6 месяцев) применением витаминно-антиоксидантной терапии.

Материал и методы. Под нашим наблюдением находились 27 пациентов (43 глаза) с развитой стадией открытоугольной глаукомы, верифицированной глаукомнои оптической нейропатией (ГОН), нормализованным ВГД. Возраст составил 63,8 (SD; 6,8). Курс лечения включал лазерную стимуляцию (ЛС) – 10 ежедневных сеансов выполнялись на приборе СМ-4.3 (λ=650 нм, W=0,4 мВт/см2, t=4 мин на папилломакулярный пучок) и дополнительно направленным лазерным излучением на ДЗН с использованием линзы 90 дптр (t=l мин). После курса ЛС пациенты получали витаминно-антиоксидантный комплекс с ресвератролом 1 мг (Нутроф® Тотал) по 1 капсуле в день в течение 6 месяцев.

Результаты. В результате комбинированного нейропротекторного лечения путем ЛС зрительного нерва и папилломакулярного пучка и 6-месячного приема витаминно-антиоксидантного комплекса с ресвератролом (1 мг) у больных глаукомной оптической нейропатией удалось повысить остроту зрения с 0,65 до 0,82 отн.ед (на 26%), повысить электрическую чувствительность зрительного анализатора, что отразилось в снижении показателя ПЭЧФ с 84,9 до 76 мкА – на 8,9 мкА (10%), улучшить объемное кровообращение глаза с 2,4 до 2,6‰ (на 8%), снизить внутриглазной сосудистый спазм с 26,7 до 21,8% (на 18%), а также значимо повысить общую светочувствительность сетчатки с 1395,0 до 1709,0 дБ (на 23%) и стабилизировать глаукомный процесс в течение 6 месяцев.

В процессе анализа результатов курса комплексной нейропротекции была выявлена выраженная корреляционная связь между увеличением общей светочувствительности сетчатки и улучшением кровообращения глаза (rs=0,71, p<0,01), а также снижением порога электрической чувствительности зрительного анализатора (ПЭЧФ) (rs=-0,84, p<0,01).

Вывод. Комбинированное нейропротекторное лечение, включающее ЛС зрительного нерва и папилломакулярного пучка и рекомендованный в течение 6 месяцев витаминно-антиоксидантный комплекс с ресвератролом (1 мг) у больных глаукомной оптической нейропатией, способствует повышению остроты зрения на 26%, повышению электрической чувствительности зрительного анализатора (снижение ПЭЧФ на 10%), улучшению кровообращения глаза на 8%, снижению внутриглазного сосудистого спазма на 18%, а также значимому повышению общей светочувствительности сетчатки на 23% и подтверждает повышение проводимости в нервных волокнах зрительного нерва, улучшение функционального состояния папилломакулярного пучка, а также стабилизацию глаукомного процесса в течение 6 месяцев.

Ключевые слова: глаукомная оптическая нейропатия, нейропротекция, лазерстимуляция, нутриентная терапия

 

Литература

  1. Гузун О. В. Ефективність низькоінтенсивного лазерного випромінювання в лікуванні хворих "сухою" формою центральної атеросклеротичної хоріоретинальної дистрофії: дисертація канд. мед. наук: 14.01.18 / Інститут ОХ і ТТ ім. В. П. Філатова АМН України. – Одеса, 2003.
  2. Гузун О. В. Эффективность лазерной стимуляции и нутриентной терапии в лечении астенопии студентов / О. В. Гузун, Н. И. Храменко // Офтальмол. журн. – 2018. – №1. – С.19-25.
  3. Киселева Т. Н. Влияние ресвератрола на микроциркуляцию и структурные изменения тканей глаза при моделировании ишемии-реперфузии сетчатки в эксперименте / Т. Н. Киселева, А. В. Чудин, А. И. Щипанова, И. П. Хорошилова-Маслова // РОЖ. – 2016. – Т.9. – №3. – С.66–75.
  4. Нероев В. В. Влияние антиоксиданта растительного происхождения (ресвератрола) на глазной кровоток в эксперименте / В. В. Нероев, Т. Н. Киселева, А. В. Чудин, А. И. Щипанова, К. А. Рамазанова // Вестник офтальмологии. – 2016. – №2. – С.55-61.
  5. Antonio M. L. Rational Basis for Nutraceuticals in the Treatment of Glaucoma // M. L. Antonio, R. Laura, A. Annagrazia, C. M. Tiziana, R. Rossella // Curr Neuropharmacol. – 2018. – Vol. 16(7). –Р.1004-1017.
  6. Aydemir O. Antioxidant effects of alpha-, gamma- and succinate-tocopherols in guinea pig retina during ischemia-reperfusion injury / O. Aydemir, M. Naziroglu, S. Celebi, T. Yilmaz, A. S. Kukner // Pathophysiology. – 2004. –Vol. 11 (3). – P.167–171. 
  7. Chen H. Oxidative stress in ischemic brain damage: mechanisms of cell death and potential molecular targets for neuroprotection / H. Chen, H. Yoshioka, G. S. Kim, J. E. Jung, N. Okami, H. Sakata // Antioxid. Redox Signal. – 2011. – Vol. 14. – P. 1505–1517. 
  8. Chen T. C. Long-term follow-up of initially successful trabeculectomy / T.  C. Chen, J. T. Wilensky, M. A. Viana // Ophthalmology. – 1997. – Vol. 104. – №7. – P. 1120-1125.
  9. Doucette L. P. The interactions of genes, age, and environment in glaucoma pathogenesis / L. P. Doucette, A. Rasnitsyn, M. Seifi, M. A. Walter // Surv Ophthalmol. – 2015. – Vol. 60 (4). – P. 310–326. 
  10. Engler M. B. Vascular relaxation to omega-3 fatty acids: comparison to sodium nitroprusside, nitroglycerin, papaverine, and D600 // Cardiovasc Drugs Ther. – 1992. – Vol.6. – P. 605–10. doi: 10.1007/BF00052562.
  11. Flammer J. The impact of ocular blood flow in glaucoma / J. Flammer,  S. Orgul, V. P. Costa // Prog Retin Eye Res. – 2002. – Vol. 21, №. 4. – P. 359-393.
  12. Hamblin M. R. Mechanisms and Mitochondrial Redox Signaling in Photobiomodulation // Photochem Photobiol. – 2017. – Nov 22. doi: 10.1111/php.12864. 
  13. Inman D. M. Metabolic vulnerability in the neurodegenerative disease glaucoma / D. M. Inman, Harun-Or-Rashid M. Front // Neurosci. – 2017. – Vol. 11. – P.146. 
  14. Jung K. I. Dietary Niacin and Open-Angle Glaucoma: The Korean National Health and Nutrition Examination Survey / K. I. Jung, Y. C. Kim, С. К. Park // Nutrients. – 2018. – Vol. 22. – №10 (4). pii: E387. doi: 10.3390 / nu10040387.
  15. Kang J. M. Ginkgo biloba and its potential role in glaucoma / J. M. Kang, S. Lin // Curr Opin Ophthalmol. – 2018. – Vol. 29 (2). – P.116-120.
  16. Kim H. Y. N-Docosahexaenoylethanolamine: A neurotrophic and neuroprotective metabolite of docosahexaenoic acid / H. Y. Kim, A. A. Spector // Mol Aspects Med. – 2018. – pii: S0098-2997(18)30024-4.
  17. Ko M. L. Dynamic changes in reactive oxygen species and antioxidant levels in retinas in experimental glaucoma / M. L. Ko, P. H. Peng, M. C. Ma, R. Ritch, C. F. Chen // Free Radic Biol Med. – 2005. – Vol. 39 (3). – P. 365–373.
  18. Koch J. C. The role of autophagy in axonal degeneration of the optic nerve / J. C. Koch, P. Lingor // Exp Eye Res. – 2016. – Vol. 144. – P. 81–89. 
  19. Lee D. Coenzyme Q10 inhibits glutamate excitotoxicity and oxidative stress-mediated mitochondrial alteration in a mouse model of glaucoma / D. Lee, M. S. Shim, K. Y. Kim, Y. H. Noh, H. Kim, S. Y. Kim // Invest Ophthalmol Vis Sci. – 2014. – Vol. 55 (2). – P. 993–1005.
  20. Lee J. Effect of Ginkgo biloba extract on visual field progression in normal tension glaucoma /J. Lee, S. W. Sohn, C. Kee // J Glaucoma. – 2013. – Vol. 22(9). – P.780–784. 
  21. Leske M. C. Risk factors for incident open-angle glaucoma: the Barbados Eye Studies / M. C. Leske, S. Y. Wu, A. Hennis // Ophthalmology. – 2008. – Vol. 115(1). – P.85-93. 
  22. Liang H. L Photobiomodulation partially rescues visual cortical neurons from cyanide-induced apoptosis / H. L. Liang, Н. Т. Whelan, J. T. Eells, Y. Meng, E. Buchmann, A. Lerch-Gaggl, M. Wong-Rile // Neuroscience. – 2006. – Vol. 12, 139 (2). – P. 639-49.
  23. Miyauchi O. Protective effect of docosahexaenoic acid against retinal ischemic injury: an electroretinographic study / O. Miyauchi, A. Mizota, E. Adachi-Usami, M. Nishikawa // Ophthalmic Res. – 2001. – Vol. 33 (4). – P. 191-5.
  24. Mozaffarieh M. Oxygen and blood flow: players in the pathogenesis of glaucoma / М. Mozaffarieh, М. С. Grieshaber, J. Flammer // Mol Vis. – 2008. – Vol. 14. – P. 224–233. 
  25. Nakazawa T. Tumor necrosis factor-alpha mediates oligodendrocyte death and delayed retinal ganglion cell loss in a mouse model of glaucoma / Т. Nakazawa, С. Nakazawa, А. Matsubara, К. Noda, Т. Hisatomi, Н. She // J Neurosci. – 2006. – Vol, 26(49). – P.12633–12641. 
  26. Nucci C. Links among glaucoma, neurodegenerative, and vascular diseases of the central nervous system / C.  Nucci, A. Martucci, M. Cesareo, F. Garaci, L. A. Morrone, R. Russo // Prog Brain Res. – 2015. – P. 221:49–65. 
  27. Nucci C. New strategies for neuroprotection in glaucoma, a disease that affects the central nervous system / C.  Nucci, R. Russo, A. Martucci, C. Giannini, F. Garaci, R. Floris  // Eur J Pharmacol. – 2016. – Vol. 787. – P.119–126. 
  28. Osborne N. N. Optic nerve and neuroprotection strategies / N. N. Osborne, G. Chidlow, C. J. Layton // Eye (Lond). – 2004. – Vol. 18, №11. – P. 1075- 1084.
  29. Owaifeer A. M. The Role of Diet in Glaucoma: A Review of the Current Evidence /A. М. Owaifeer, A. А. Taisan // Ophthalmol Ther. – 2018. –  Jun 7(1). – Р.19-31.
  30. Rajendram R. Neuroglobin in normal retina and retina from eyes with advanced glaucoma / R. Rajendram, N. A. Rao // Br J Ophthalmol. – 2007. – Vol.91(5). – P.663–666
  31. Ritch R. Neuroprotection: Is it already applicable to glaucoma therapy? // Curr. Opin. Ophthalmol. – 2000. – Vol.11. – P.78–84. 
  32. Saccà S. C. The Eye, Oxidative Damage and Polyunsaturated Fatty Acids / S. C. Saccà, C. A. Cutolo, D. Ferrari, P. Corazza, C. E. Traverso // Nutrients. – 2018. – Vol. 24;10(6). – pii: E668. doi: 10.3390/nu10060668.
  33. Salehpour F. Transcranial near-infrared photobiomodulation attenuates memory impairment and hippocampal oxidative stress in sleep-deprived mice /F. Salehpour, F. Farajdokht, M. Erfani, S. Sadigh-Eteghad, S. S. Shotorbani, M. R/ Hamblin, P. Karimi, S. H. Rasta, J. Mahmoudi // Brain Res. – 2018. – Vol. 1;1682:36-43. doi: 10.1016/j.brainres.2017.12.040.
  34. Song W. Neuroprotective therapies for glaucoma /W. Song, P. Huang, C. Zhang // Drug Des Devel Ther. – 2015. – Vol.9. – P.1469–1479. 
  35. Tezel G. Hypoxia-inducible factor 1alpha in the glaucomatous retina and optic nerve head / G. Tezel, M. B. Wax // Arch Ophthalmol. – 2004. – Vol.122(9). – P.1348–1356. 
  36. Wan M. J. Survey of complementary and alternative medicine use in glaucoma patients /M. J. Wan, S. Daniel, F. Kassam // J Glaucoma. – 2012. – Vol. 21(2). – P.79–82. 
  37. Wang Y. Autophagy in glaucoma: Crosstalk with apoptosis and its implications / Y. Wang, C. Huang, H. Zhang, R. Wu // Brain Res Bull. – 2015. – Vol.117. – P.1–9. 
  38. Yanagi M. Vascular risk factors in glaucoma: a review /М. Yanagi, R. Kawasaki, J. J. Wang, T. Y. Wong, J. Crowston, Y. Kiuchi // Clin. Exp. Ophthalmol. –2011. – Vol.39. – P. 252–258. 

Поступила 27.08.2018