Офтальмол. журн. — 2013. — № 5. — С.61-66.
УДК 617.711+617.764-008.8:612.015.11-085-092.19
https://doi.org/10.31288/oftalmolzh201356166
Влияние бензалкония хлорида на активность окислительно-восстановительных ферментов в тканях переднего отдела глаза
Т. Б. Гайдамака 1, д-р мед. наук, старший научный сотрудник, В. И. Сенишин 2, врач-ординатор
1ГУ «Институт глазных болезней и тканевой терапии им. В. П. Филатова НАМН Украины», отдел патологии роговицы
2Львовская областная клиническая больница
E-mail: oko_science@mail.ru
Ключевые слова: передний отдел глаза, глазные капли, консерванты, окислительно-восстановительные ферменты
Ключові слова: передній відділ ока, очні краплі, консерванти, окисно-відновні ферменти
Вступ. Наявність як позитивних, так і негативних властивостей консерванту очних крапель бензалконію хлориду (БАК) визначає актуальність і необхідність проведення досліджень з вивчення патогенетичних механізмів його дії.
Мета дослідження. Вивчення впливу БАК на активність окислювально-відновних ферментів лактатдегідрогенази, малатдегідрогенази і глюкозо-6-фосфатдегідрогенази рогової оболонки, кон'юнктиви і сльозноїрідини в експерименті.
Матеріал і методи. В експерименті на тваринах (17 кроликів) визначали активність лактатдегідрогенази, малатдегідрогенази і глюкозо-6-фосфатдегідрогенази в рогівці, кон'юнктиві і сльозній рідині після інстиля-цій 0,02 % розчину консерванту бензалконію хлориду (ВАК), виготовленого на ізотонічному фосфатному буфері (рН 7,3 - 7,4).
Результати. Встановлено, що БАК істотно знижує активність окислювально-відновних ферментів в рогівці і кон'юнктиві і підвищує їх активність в сльозній рідині ока.
Висновок. Застосування БАК суттєво порушує перебіг окислювально-відновних процесів в поверхневих структурах очного яблука, що, у свою чергу, призводить до зниження захисно-пристосувальних можливостей тканин переднього відділу ока і порушенню структурно-функціональних властивостей рогівки і кон'юнктиви ока.
Литература
1.Анина Е. И. Распространенность заболеваний роговой оболочки глаза у населения Украины / Анина Е. И., Мартопляс К. В. // Тези доп. II Міжнародної наук. конф. офтальмологів Причорномор'я. — Одеса, 2004.
2.Гайдамака Т. Б., Сенишин В. И. Влияние консервантов глазных капель на восстановительный потенциал глутатиона в тканях переднего отдела глаза // Офталь-мол. журн. — 2012. — № 6. — С. 96- 100.
3.Наследов А. SPSS компьютерный анализ данных в психологии и социальных науках / Наследов А. — Спб.: Питер, 2005. — 416 с.
4.Новые методы биохимического анализа // Изд. Ле-нинградского универ. — 1991. — 395 с.
5.Ammar D. A., Noecker R. J., Kahook M. Y. Effects of ben-zalkonium chloride-preserved, polyquad-preserved, and sofZia-preserved topical glaucoma medications on human ocular epithelial cells // Adv. Ther. — 2010. — Vol. 27. — P. 1-9.
6.Ayaki M., Yaguchi S., Iwasawa A. Cytotoxicity of oph-thalmic solution with and without preservatives to human corneal endothelial cells, epithelial cells and conjunctival epithelial cells // Clin. Exp. Ophthalmol. — 2008. —
Vol. 36. — P. 553-559.
7.Ayaki M., Shimada K., Yaguchi S. Corneal and conjuncti-val toxicity of disinfectants — assessing safety for use with ophthalmic surgical instruments // Regul. Toxicol. Pharmacol. — 2007. — Vol. 48. — P. 292- 295.
8.Barki W. H., Tahir M. Effects of topical benzalkonium chloride on corneal epithelium // Biomedica. — 2007. — Vol. 23. — P. 65- 70.
9.Baudouin C., Labbe A., Liang H. Preservatives in eyedrops: the good, the bad and the ugly // Prog. Retin. Eye Res. — 2010. — Vol. 29. — P. 312- 334.
10.Debbasch C., Pisella P-J., Magda De Saint Jean. Mito-chondrial activity and glutathione injury in apoptosis induced by upreserved and preserved p-blockers on chang conjunctival cells // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. — 2001. — Vol. 42. — P. 2525-2533.
11.Dickinson D. A., Forman H. J. Cellular glutathione and thiols metabolism // Biochem. Pharmacol. — 2002. — Vol. 64. — P. 1019-1026.
12.Hopes M., Broadway D. C. Preservative-free Treatment in Glaucoma Is a Sensible and Realistic Aim for the Future // Europ. Ophthalmic. Review. — 2010. — Vol. 4. — P. 23-28.
13.Hughes E. H., Pretorius M., Eleftheriadis H. Long-term recovery of the human corneal endothelium after toxic injury by benzalkonium chloride // Br. J. Ophthalmol. — 2007.— Vol. 91. — P. 1460- 1463.
14.Kahook M. Y., Ammar D. A. In vitro toxicity of topical ocular prostaglandin analogs and preservatives on cor-neal epithelial cells // J. Ocul. Pharm. Ther. — 2010. — Vol. 26. — P. 259-263.
15.Kahook M. Y., Noecker R. J. Comparison of corneal and conjunctival changes after dosing of travoprost preserved with sofZia, latanoprost with 0,02 % benzalkonium chloride, and preservative-free artifical tears // Cornea. — 2008.— Vol. 27. — P. 339-343.
16.Khot-Reiter S., Jessen B. A. Evaluation of the cytotoxic effects of ophthalmic solutions containing benzalkonium chloride on corneal epithelium using an organotypic 3-D model // BMC Ophthalmol. — 2009. — Vol. 9. — P. 1471-1475.
17.Kim J. R., Oh T. H., Kim H. S. Effect of benzalkonium chloride on the ocular surface of the rabbit // Jpn. J. Oph-thalmol. — 2011. — Vol. 55. — P. 283- 293.
18.Kozobolis V. P., Detorakis E. T., Maskaleris G. Corneal sensitivity changes following the instillation of latanoprost, bitamoprost, and travoprost eyedrops // Am. J. Ophthalmol. — 2005. — Vol. 139. — P. 742-743.
19.Leonardi A., Jose P. J., Zhan H. Tear and mucus eotaxin-1 and eotaxin-2 in allergic keratoconjunctivitis // Ophthal-mol. — 2003. — Vol. 110. — P. 487- 492.
20.Liang H., Baudouin C., Pauly A. Conjunctival and corneal reactions in rabbits following short- and repeated exposure to preservative-free tafiuprost, commercially available latanoprost and 0,02 % benzalkonium chloride // Br. J. Ophthalmol. — 2008. — Vol. 92. — P. 1275- 1282.
21.Lin Z., Liu X., Zhou T. A mouse dry eye model induced by topical administration of benzalkonium chloride // Mol. Vis. — 2011. — Vol. 17. — P. 257- 264.
22.Majumdara S., Hippalgaonkara K., Repka M. A. Effect of chitosan, benzalkonium chloride and ethylendiamine-tetraacetic acid on permeation of acyclovir across isolated rabbit cornea // Int. J. Pharm. — 2008. — Vol. 348. — P. 175-178.
23.McCarey B., Edelgauser H. In Vivo corneal epithelial permeability following treatment with prostaglandin ana-logues with or without benzalkonium chloride // J. Ocul. Pharm. Ther. — 2007. — Vol. 23. — P. 445-447.
24.Pauly A., Meloni M., Brignole-Baudouin F. Multiple end-point analysis of the 3D-reconstituted corneal epithelium after treatment with benzalkonium chloride: early detection of toxic damage // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. — 2009. — Vol. 50. — P. 1644-1652.
25.Reim M., Weidenfeld E., Budi Santoso A. W. Oxidized and reduced glutathione levels of the cornea in vivo // Grae-fes Arch. Klin. Exp. Ophthalmol. — 1979. — Vol. 211. — P. 165-175.
26.Trocme S., Hwang L-J., Bean G. W. The role of benzal-konium chloride in the occurrence of punctate keratitis: a meta-analysis of randomized, controlled clinical trials // Ann. Pharmacother. — 2010. — Vol. 44. — P. 1914-1921.
27.Whitson J. T., Cavanagh H. D., Lakshman N. Assessment of corneal epithelial integrity after acute exposure to ocular hypotensive agents preserved with and without benzalkonium chloride // Adv. Ther. — 2006. — Vol. 23. — P. 663-671.
28.Wilson F. M. Adverse external ocular effects of topical ophthalmic therapy: an epidemiologic, laboratory, and clinical study // Tr. Am. Ophth. Soc. — 1983. — Vol. 19. — P. 854-858.
29.Wu G., Fanf Y-Z., Yang S. Glutathione metabolism and its implication for health // J. Nutrition. — 2004. — Vol. 134. — P. 489- 492.
30.Xiong C., Chen D., Liu J. A rabbit dry eye model induced by topical medication of a preservative benzalkonium chloride // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. — 2008. — Vol. 49. — P. 1850-1856.
31.Ye J., Wu H., Zhang H. Role of benzalkonium chloride in DNA strand breaks in human corneal epithelial cells // Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. — 2011.— Vol. 249. — P. 1681-1687.
32.Zhivov A., Kraak R., Bergter H. Influence of benzalkoni-um chloride on langerhans cells in corneal epithelium and development of dry eye in healthy volunteers // Curr. Eye Res. — 2010. — Vol. 35. — P. 762- 769.